摘要: 研究背景心肌重构(Myocardial remodeling)以心肌细胞肥大和心肌纤维化为主要表现形式。心肌肥厚代偿早期,肥大心肌细胞的细胞核及线粒体增大增多,需要能量增加。随着心肌重构发生发展,心肌细胞能量供应不足及能量利用障碍,导致心肌细胞凋亡坏死。心肌细胞坏死引起心肌细胞数量减少,心肌收缩力降低,触发炎性级联反应,清除受损细胞及坏死细胞并激活修复过程,过度炎症反应增加心脏损伤,加重纤维化进程,引起收缩功能障碍。细胞外间质纤维化程度加重,表现为心肌细胞外基质(Extracellular matrix,ECM)积累,增加心肌僵硬度,降低心室顺应性,引起舒张功能障碍。心肌结构重构导致心肌细胞自律性、兴奋性、传导性等电生理特性改变,诱发多种心律失常,影响心脏泵血功能,加重血流动力学紊乱,极易合并心源性休克,甚至猝死。由于心肌结构重构和电重构(Electrical remodeling)导致心肌缺血损伤和再灌注损伤,恶性重构加重,终至不可逆转的心力衰竭。因此,探讨心肌重构机制,寻找潜在靶点预防及延缓心肌肥厚对防治心力衰竭具有重要意义。随着分子生物学技术发展,心肌重构集中在重构相关基因转录、翻译、蛋白合成与修饰等信号通路调控研究方面。例如掌握能量调控枢纽的一磷酸腺苷活化蛋白激酶/雷帕霉素靶蛋白(AMPK/mTOR),心肌间质纤维化相关转化生长因子(TGFβ),细胞有丝分裂相关促分裂原活化蛋白激酶(MAPK),信号转导与转录激活因子(JAK/STAT)等信号通路。多种信号通路彼此通过上下游分子相互作用,形成复杂多变的细胞信号网络系统,精准调控心肌重构。能量代谢、炎症、自噬、凋亡、内质网应激、氧化应激等任何环节调控异常都会导致心肌重构不良。因此,早期发现心肌重构不良相关信号通路蛋白给予靶向干预,可能预防心力衰竭的发生发展。淫羊藿苷Ⅱ(acariin Ⅱ,ICA Ⅱ)又称淫羊藿次苷,是从淫羊藿中提取的黄酮类化合物之一,通过JAK2-STAT3,MAPK-ERK,和PI3k-Akt-mTOR等多种信号通路发挥细胞周期调控、细胞凋亡、血管生成和氧化应激等生物学效应。ICAⅡ通过ROS/GSK-3b线粒体信号通路发挥抗氧化活性作用,在神经PC12细胞中缓解氧化应激诱导自噬。ICAⅡ在体外和体内抑制PI3K/Akt和RAS/ERK通路,减轻EGFR刺激mTOR磷酸化,发挥抗癌作用。ICA Ⅱ通过抑制心肌细胞凋亡和氧化应激,对高血压所致心肌细胞凋亡和缺血再灌注损伤有保护作用。基于ICA Ⅱ心血管保护作用,ICA Ⅱ在心血管研究领域倍受关注。在本实验室中,我们已经研究发现ICA Ⅱ通过抑制活性氧依赖JNK/NF-κB途径,保护心肌细胞免受LPS诱导炎症损伤和凋亡。然而,ICA Ⅱ是否能减轻压力超负荷所致心肌重构,目前尚不清楚。在本研究中,我们将探讨ICA Ⅱ对压力超负荷导致小鼠心肌肥厚和PE诱导新生大鼠心肌细胞肥大的保护作用和可能机制。本文采取Real time-PCR检测肥大基因相关mRNA表达水平;Western Blot检测p-AMPKa,T-AMPKa,p-Akt,T-Akt,p-mTORC1,T-mTORC1,p-P70S6K,T-P70S6K,p-4EBP1,T-4EBP1相关信号通路蛋白质水平,进一步明确ICA Ⅱ改善心脏重塑的可能分子机制。研究目的探索ICA Ⅱ对心肌重构的作用及机制。通过动物实验和细胞实验研究:ICA Ⅱ在体内对压力超负荷诱导小鼠心肌肥大的作用及机制;ICA Ⅱ在体外对苯肾上腺素(PE)诱导新生大鼠心肌细胞肥大的作用及机制;明确ICA Ⅱ是否是治疗或辅助治疗恶性心肌重构的潜在药物。研究方法第一部分:动物实验选取8-9周龄,体重23.5-24.5g之间的健康雄性C57BL/6J小鼠。主动脉缩窄术(AB)建立压力负荷诱导的心肌肥厚模型,假手术组(sham)暴露主动脉后不予结扎。实验动物随机分配至四个实验组:Sham+vehicle(Veh)(n=16),Sham+ICA Ⅱ(ICA Ⅱ)(n=16),AB+ vehicle(AB)(n=16)和 AB+ICA Ⅱ(n=16)。ICA Ⅱ用60%乙醇溶解,然后用0.9%生理盐水稀释,ICA Ⅱ浓度1mg/ml进行灌胃。其中 Sham+ICA Ⅱ 组和 AB+ ICA Ⅱ 组给予 ICA Ⅱ(10 mg/kg/d)灌胃 6 周,而 Sham+Veh组和AB+ Veh组给予等量ICA Ⅱ溶剂灌胃6周。采用M型二维超声心动图测定各组小鼠 HR、IVSd、IVSs、LVPWd、LVPWs、LVDd、LVDs、FS、EF评估小鼠心功能变化。采用左心室压力一容积曲线检测LVESP、LVEDP、dp/dt max、-dp/dtmin等指标评估小鼠左心室血流动力学改变。紧接着颈椎离断处死小鼠,快速取出心脏并称重,同时记录小鼠体重(body weight,BW)、心重(heart weight,HW)、肺重(lung weight,LW)和胫骨长度(tibial length,TL),计算LW/TL,HW/BW和LW/BW等比值。收集的心脏随机分为两组,一组取左室保存于-80℃用于蛋白印迹和RT-PCR检测;另一组心脏经10%KC1停跳在舒张期后,脱水、包埋后切片用于病理染色。其中苏木素伊红(HE)染色用于观察小鼠心肌细胞横截面积变化,心脏组织切片天狼猩红(PSR)染色评估小鼠心肌间质、血管周围纤维化情况及检测纤维化面积。RNA提取试剂盒从小鼠心脏组织中提取总RNA,RT-PCR用于检测小鼠心肌组织中心肌细胞肥大相关标志物心房钠尿肽(ANP)、B型利钠肽(BNP)、α-肌球蛋白重链/β-肌球蛋白重链(α-MHC/β-MHC)和检测纤维化相关标志物转化生长因子-β(TGF-β)、胶原蛋白Ⅰ(Coll Ⅰ)、胶原蛋白Ⅲ(Coll Ⅲ)、结缔组织生长因子(CTGF)等mRNA表达量改变。采用蛋白质免疫印迹法检测心肌组织蛋白表达量p-Akt,T-Akt,p-AMPKα,T-AMPKα,p-ACC,T-ACC p-mTORC1,T-m TORC1,p-P70S6K,T-P70S6K,p-4EBP1,T-4EBP1和 GAPDH。第二部分:细胞实验1-3日龄的Sprague-Dawley大鼠鼠婴用于制备新生大鼠心肌细胞(NRCM)。分离培养的NRCM中分别给予0μM,2.5μM,5μM,10μM和20μM的ICAII作用1h后检测p-AKT和p-AMPKα表达改变;给予ICAⅡ分别作用Oh,0.5h,1h,3h,6h后检测p-AKT和p-AMPKα表达改变;分别给予白黎芦醇(RSV,20μM),5-氨基-4-甲酰胺咪唑核糖核苷酸(AICAR,20μM)和ICAⅡ(20μM)检测p-AMPKα表达改变;NRCM细胞体外接受苯肾上腺素(PE)刺激诱导心肌细胞肥大模型,给予ICAⅡ干预后蛋白质免疫印迹法(Western Blot)检测p-Akt T-Akt,p-AMPKα,T-AMPKα,p-ACC,T-ACC,p-mTORC1,T-mTORC1,p-P70S6K,T-P70S6K,p-4EBP1,T-4EBP1 和 GAPDH 表达的改变。在 PE 诱导的心肌细胞肥大模型中,给予AMPK抑制剂复合物C(compoundC,CPC)后,免疫荧光检测心肌细胞横截面大小;RT-PCR用于检测心肌细胞肥大基因标志物心房钠尿肽(ANP)、B型利钠肽(BNP)、α-肌球蛋白重链/β-肌球蛋白重链(a-MHC/β-MHC)的表达。研究结果第一部分1.ICA Ⅱ减轻压力超负荷所致心肌肥厚:AB组与Veh或ICAⅡ比较,压力超负荷显著诱导小鼠心脏肥大,表现为HW,HW/BW,LW/BW显著增加(AB组vs Veh或ICAⅡ组,P<0.05),而给予ICA Ⅱ显著抑制AB诱导的HW、HW/BW和LW/BW的增加(AB+ICAⅡ组vsAB组,P<0.05);心脏HE染色进一步显示压力负荷显著加剧左室肥厚和心肌细胞肥大(AB组vsVeh或ICAⅡ组,P<0.05),ICA Ⅱ显著抑制AB诱导的心肌细胞肥大(AB+ICAⅡ组vsAB组,P<0.05);肥大相关基因ANP和BNP表达在AB组明显上调,心脏组织中成熟型a-MHC的表达显著降低,胚胎型β-MHC表达显著增加(AB组vsVeh或ICAⅡ组,P<0.05),ICAⅡ显著抑制ANP,BNP和β-MHC表达,同时抑制a-MHC表达下调(AB+ICAⅡ组 vsAB 组,P<0.05)。2.ICAⅡ减轻压力超负荷致心肌纤维化:PSR染色示压力负荷显著促进心脏间质和血管周围纤维化,左室中胶原沉积分数显著增加(AB组vs Veh或ICAⅡ组,P<0.05),ICAⅡ显著抑制心脏间质和血管周围纤维化,并抑制左室中胶原沉积分数增加(AB+ICAⅡ组vsAB组,P<0.05);RT-PCR示压力负荷显著促进纤维化相关基因TGF-β、Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原和结缔组织生长因子(CTGF)表达(AB组vs Veh或ICAⅡ组,P<0.05),ICAⅡ能显著下调这些纤维化相关基因表达(AB+ICAⅡ 组 vsAB 组,P<0.05)。3.ICAⅡ改善压力超负荷所致心功能不全:M型超声心动示压力负荷致小鼠心脏舒缩功能不全,表现为LVEDD和LVESD显著增加,LVEF和FS显著下降;小鼠左心室后壁显著肥厚,表现为LVPWs和LVPWd显著增加(AB组vsVEH或ICAⅡ组,P<0.05);所有这些参数都可以通过ICAⅡ治疗而得到显著改善(AB+ICAⅡvsAB组,P<0.05);不同组间HR无显着性差异(P>0.05)。此外,压力容积曲线(PV-loop)观察各组心脏血流动力学变化,AB组小鼠LVESP和LVEDP 显著升高(AB 组 vs VEH 或 ICAⅡ 组,P<0.05),而 dp/dt max 和 dp/dt min则显著降低,所有这些受损血流动力学参数都可以通过ICAⅡ治疗得到显著改善(AB+ICAⅡ 组 vsAB 组,P<0.05)。4.ICAⅡ在小鼠心脏内激活AMPKα并抑制Akt磷酸化:压力负荷作用下,心脏组织中AMPKa磷酸化水平显著下调(AB组vs Veh或ICAⅡ组,P<0.05),其下游信号通路中mTORC1,P70S6K和4EBP1磷酸化水平显著上调(AB组vs Veh或ICAⅡ组,P<0.05);给予ICAⅡ治疗后显著恢复压力负荷作用下小鼠心脏组织中AMPKa磷酸化水平并抑制下游信号通路中mTORC1,P70S6K和4EBP1磷酸化激活(AB+ICAⅡ组vsAB组,P<0.05)。此外,检测到压力负荷作用下心脏组织中Akt磷酸化显著上调(AB组vs Veh或ICAⅡ组,P<0.05),ICAⅡ处理可显著抑制Akt磷酸化(AB+ICAⅡ组vsAB组,P<0.05)。第二部分1.体外实验中,ICAⅡ激活AMPKa抑制mTORC1活性。分别给予0μM,2.5μM,5μM,10μM,20μM ICAⅡ作用于 NRCM 观察到 AMPKa激活呈现浓度依赖性;不同浓度ICAII均未观察到对AKT磷酸化水平的抑制。选择20μM ICAⅡ作用于NRCM可观察到在0.5h,1h,3h,6h均显著促进AMPKa磷酸化,但不同时间点ICAⅡ对AKT的磷酸化水平均无显著影响。进一步与激活AMPKa的已知化合物对比发现,ICAⅡ促进AMPKa磷酸化的作用显著强于白藜芦醇(RSV)(ICAⅡ组vsRSV组,P<0.05),且其激活AMPKa的作用与AICAR相当(ICAⅡ组vs AICAR 组,?>0.05)。2.体外实验中,ICAⅡ通过抑制AMPK/mTORC1通路改善苯肾上腺素(PE)诱导的NRCM肥大。PE作用于NRCM导致AMPKa磷酸化水平显著下调(PE组vsVEH或ICAⅡ组,P<0.05),其下游信号通路中mTORC1,P70S6K和4EBP1的磷酸化水平显著上调(PE组vsVEH或ICAⅡ组,P<0.05);给予ICAⅡ有效促进AMPKa磷酸化(PE组vs VEH或ICAⅡ组, 摘要译文