摘要: 喹噁啉-N,N-二氧类化合物是具有广谱抗菌和促生长作用的动物专用药,被广泛应用于养殖业,代表品种有卡巴氧和喹乙醇。近年来,因其明显的毒副作用而被禁用或限制使用。开发毒副作用更低的本类替代产品具有重大意义。喹赛多是喹噁啉-N,N-二氧类一个新品种,现有的毒理学及临床药理学研究表明,与同类临床应用的产品相比,喹赛多毒副作用小、安全性高、用药后吸收快、消除迅速、残留期短、无积蓄作用。用放射性同位素示踪试验可研究物质代谢的各种问题,如代谢途径、转变的速度、代谢产物质在体内的位置。本课题鉴于喹赛多在试验动物和靶动物体内吸收、分布、代谢等途径不明确,很多主要代谢产物和次要代谢产物去向不明,甚至用现有的常规研究方法无法定性和定量它们等诸多原因,首次应用卤素和氚置换反应原理,标记得到高比活度、高放化纯度的氚标记邻硝基苯胺,再用放射性微量合成方法制备出高比活度、高放化纯度的氚标记喹赛多,并在大鼠和肉鸡体内进行了同位素示踪研究,阐明喹赛多在动物体内吸收、分布、代谢规律及物料平衡,确定残留靶组织,用飞行时间质谱法和高效液相色谱-放射性联合检测方法分离鉴定可能存在的代谢产物,探寻其代谢规律,并用高效液相色谱法定量分析原形喹赛多及其已知重要代谢产物脱二氧喹赛多和喹嗯啉-2-羧酸。1.氚标记喹赛多的合成与质量研究本文经过五步反应得到氚标记喹赛多。按照放射性合成制备常规操作步骤,首先用氢气代替氚气,模拟打通氚标记喹赛多合成常规反应路线,优化反应路线,提高反应收率;再将常规反应步骤转换为微量合成反应路线,为了在此后进行的“热试验”中得到高比活度、高收率的氚标记喹赛多,保证“热试验”的安全、顺利进行,再次优化微量合成反应每一个步骤;最后,根据微量合成优化条件,完全按照其反应步骤和放射性合成规范,带氚进行放射性“热试验”,获得氚标记目标化合物,并进行质量考核和保存稳定性研究。合成工艺研究:目的是打通氚标记CYX合成工艺。氚标记CYX合成试验步骤是:4-Br-ONA的合成是以ONA为起始原料,经过溴化,得到4-Br-ONA,收率76%。4-[H]-ONA的合成是在催化剂10% Pd/C和酸接受体NaOH作用下脱溴置换氢原子,生成4-[H]-ONA,收率11%.[H]-BFO的合成是用次氯酸钠氧化4-[H]-ONA,得到[H]-BFO,产率95%。6-[H]-FQDDA的合成是以吡咯烷为催化剂,[H]-BFO和丙酮醛缩二甲醇缩合生成6-[H]-FQDDA,收率57.68%。6-[H]-CYX的合成是6-[H]-FQDDA在甲醇和浓盐酸的混合体系中与氰乙酰肼反应生成6-[H]-CYX,收率90.23%。中间体氰乙酰肼的合成是水合肼和氰乙酸乙酯在无水乙醇中生成氰乙酰肼,收率92.2%。微量合成改造:目的是将常量合成工艺的投料量缩小至一定比例,再进行优化反应条件,为下一步进行的放射性试验中获得适合于动物试验的高放射性比活度和满意的反应收率,也是放射性操作之前的模拟试验。本研究主要是针对以下四步反应进行微量合成改造:4-[H]-ONA的合成中4-Br-ONA投料量缩小至20mmg,采用特制氢化系统,采用半制备高效液相色谱法分离纯化,收率达41.8%。[H]-BFO的合成,4-[H]-ONA的投料量缩小至15mg,优化后的收率为78%.6-[H]-FQDDA的合成,[H]-BFO的投料量缩小为20mg,优化后的收率42.3%。6-[H]-CYX的合成,6-[H]-FQDDA的投料量可缩小至10mg,反应收率达92.5%。氚标记喹赛多的合成与质量研究:目的是利用“冷试验”中得到的试验步骤、微量改造数据和操作经验,严格按照放射性反应操作规程,进行放射性反应操作,获得氚标记CYX。4-[3H]-ONA的合成反应是在特殊的氚化反应装置上进行,制备得到的4-[3H]-ONA的比活度为6.18Ci/mmol,不稀释时可达15Ci/mmol或更高;放化纯度99.0%以上。最终目标化合物6-[3H]-CYX的化学纯度≥99.5%;放射性比活度为39.94mCi/mmol,需要时可不稀释4-[3H]-ONA,合成得到的6-[3H]-CYX的比活度可轻松达到10Ci/mmol。放化纯度≥99%。其质量指标符合动物示踪研究要求,为进行CYX在动物体内吸收、分布、代谢和排泄研究提供了物质基础。2.氚标记喹赛多在大鼠体内的处置研究为全面揭示CYX在大鼠体内的变化过程及规律,本研究采用放射性示踪技术,开展了6-[3H]-CYX在大鼠体内的分布、代谢与排泄研究。排泄组3公3母大鼠一次性灌服6-[3H]-CYX10mg/kg bw后收集每24h尿液、粪便至7d,宰杀大鼠,取血浆、组织样品。燃烧尿液、粪便、组织样品、尸体和洗笼液,采用LSC检测总放射性;用HPLC-LSC联合技术和LC-MS/MS检测方法检测尿液、粪便和组织样品提取液。分布消除组大鼠连续灌服氚标记喹赛多7d,每组2公2母,5组动物分别于6h、1d、3d、7d、14d时间点宰杀,采用LSC检测总放射性,并对血浆、肌肉、肾脏和肝脏进行HPLC-LSC和LC-MS/MS检测。结果表明,大鼠一次性灌服喹赛多后,24h可排出放射性药物91.22±2.70%,主要排泄途径为粪便,排出量占给药量的60.25±1.78%,另34.75±1.04%经尿液排出。合计所有收集检测的排泄物、组织、残余尸体和代谢笼洗涤液总放射性活度占总给药量(总回收率)的96.14±1.31%。大鼠灌服达稳态后,喹赛多可广泛分布与体内各器官、组织。肝脏中放射性物质残留时间最长,到第14天完全消失,可确定为喹赛多残留的靶组织。脑、膀胱、骨头中放射性含量最低,维持时间短。用HPLC-LSC联合检测方法和LC-MS/MS检测方法对血浆、各组织和排泄物提取样品,发现了13种代谢产物。代谢产物的结构分析显示,CYX在大鼠体内发生N→O键的还原、侧链的断裂、侧链上C=N键的氢加成;可能存在的QCA结合代谢等反应。血浆中检测到2种代谢产物,肝脏中发现Cy6在内的7种代谢产物,肾脏中发现5种代谢产物,肌肉中有5种代谢产物。除脱氧喹赛多和喹嗯啉-2-羧酸外,其余代谢产物均为首次发现。已发现的代谢产物结构确证、性质研究、定量研究和喹赛多消化道代谢尚待开展深入研究。3.氚标记喹赛多在鸡体内的处置研究CYX的早期研究表明其对家禽具有促生长作用,提示CYX存在应用于家禽生产的潜能。作为食品生产动物用药,食品安全性是考核其开发应用前景的一个重要指标。因此,本研究采用放射性示踪技术,开展了6-[3H]-CYX在鸡体内的分布、代谢与排泄研究。在排泄研究中,一组3公3母肉鸡一次性灌服氚标记喹赛多后收集每隔24h的粪便;宰杀动物后收集血液、组织样品、尸体和洗笼液。采用LSC和HPLC-LSC联合技术检测尿液、粪便和组织样品提取液。在组织分布消除研究中,鸡连续灌服氚标记喹赛多7d,每组2公2母,5组动物分别于6h、1d、3d、7d、14d时间点宰杀,测定各组织、脏器中放射性物质含量变化,并对胆汁、肝脏、血浆、肌肉、肾脏和脂肪进行HPLC-LSC。结果表明,总收集的96h内,在0~12h收集的粪便中排出放射性占总给药放射性的83.32%。在0-24h收集的粪便中,已平均排出总给药量的90.70%。粪便中排出的放射性占总给药剂量的95.94±1.47%。收集粪便结束后宰杀的鸡尸体中检测到的合计药物含量平均占给药总量的0.078±0.053%。CYX的鸡体内总回收率为96.02±1.71%。CYX在鸡体内分布广泛,消除迅速。停药后第7天,除了血液、心脏、肝脏、肺脏、肾脏,其它组织器官中的放射性均低于检测限。停药后的第14d,所有组织中检测不到放射性。在鸡体内,停药后6h即放射性总残留浓度低于安全浓度(肝脏安全浓度为90μg/g)。肝脏消除速度比肺脏和肾脏消除速度略慢,其半衰期最长,可将肝脏确定为靶组织。在鸡体内可定量的拥有标准品的代谢产物中,QCA在肝脏、肾脏等组织中的被检出时间最长,同时与总残留存在高度相关,半衰期为24.93h。HPLC-LSC联合检测结果表明,鸡粪便中除了大量原形CYX以外还发现了QCA、BDCYX和未知代谢产物M。胆汁、肝脏、血浆、肌肉、肾脏和脂肪中除了Cy6和]BDCYX外还发现较多的放射性代谢产物存在。其中,CYX、Cyl和Cy6等拥有标准品和对照品的化合物可确定之外还有部分代谢产物尚未鉴定。今后,需进一步用在线流动液闪仪和LC-MS/MS结合研究,可定性和定量这些未知代谢产物。综上所述,本课题首次采用氚-卤置换反应制备了高放化纯度、高比活度的4-[3H]-ONA,进一步制备得到适合于进行动物体内示踪研究的4-[3H]-CYX,并对其进行质量标准研究。以此为基础,进行CYX在大鼠和鸡体内的物料平衡研究,阐明了药物进入体内到排除体外的动态平衡,对排泄物中的代谢产物进行了鉴定;进行组织总残留的分布和消除研究,解释和探讨了药物在体内分布、消除和代谢规律。本文合成的氚标记邻硝基苯胺不仅是合成制备氚标记喹赛多的起始原料,而且还可以直接用作喹嗯啉母环6位上无取代基团的喹嗯啉-1,4-二氧化物类和喹嗯啉类(Quinoxaline)的氚标记合成起始原料,为这两类化合物的体内外处置研究提供了物质基础。本研究制备得到的次要产物4-[2H]-ONA,可用作上述化合物的氘标记起始原料,合成获得喹嗯啉-1,4-二氧化物类和喹噁啉类,并作为内标,用于LC-MS/MS定量分析研究。本文动物处置研究为全面了解喹赛多在动物体内处置过程提供了有效依据,对喹赛多的安全使用具有十分重要的意义。并提供了不可多得的科研思路和参考依据。从而指导临床用药方式,并保障食品动物安全提供了理论依据。同时,本研究建立的研究方法,为其它同类药物的相关研究提供了详细的研究思路。 摘要译文